Автор:

Али Найманов

Рубрика:

Актуальные проблемы туберкулеза и паратуберкулеза животных

А.Х. Найманов, Т.Г. Байтубаев

 

Ранее в некоторых регионах нашей страны в комплексе оздоровительных противотуберкулёзных мероприятий в неблагополучных хозяйствах в качестве дополнительного метода применяли иммунизацию молодняка крупного рогатого скота вакциной БЦЖ. Иммунизированные животные, как правило, реагировали на туберкулин. Отсутствие методов дифференциации поствакцинальной и инфекционной аллергии приводило к длительной потере контроля за состоянием иммунизированного поголовья. Поэтому изыскание возможности дифференциации поствакцинальных и инфекционных реакций является актуальной проблемой.

В доступной литературе имеются некоторые сообщения о возможности использования в медицинской практике нескольких методов дифференциации поствакцинальных и инфекционных аллергических реакций.

В ветеринарной практике также имеются некоторые работы по дифференциальной диагностике поствакцинальной и инфекционной аллергии.

Так, А.М. Говоров (1954) для дифференциации поствакцинальных и инфекционных аллергических реакций применял разведенный 1:10, 1:20 туберкулин. Автор установил, что у больных туберкулёзом животных реакции на разведённый туберкулин (1:10) в 80,0 % случаях оставались положительными длительное время.

Л.М. Ходун (1985) для дифференциации поствакцинальных и инфекционных аллергических реакций рекомендует проводить серологические исследования крови через 4–5 месяцев после вакцинации.

Ю.Я. Кассич (1977) предлагал проводить исследование сывороток крови в РСК. При этом о поствакцинальной аллергии судят по отсутствию антител, либо по их наличию в недиагностическом титре (1:10), а об инфекционной аллергии – по наличию антител в диагностических титрах (1:20, 1:80).

М.А. Сафин (1986) для дифференциации поствакцинальных и инфекционных реакций применял глазную туберкулиновую пробу. Автор указывает, что у иммунизированных животных на глазную пробу реакции отсутствовали, тогда как больные реагировали положительно.

А.Л. Лазовская, В.П. Сафронов, Е.М. Максимова (1986) исследовали 616 иммунизированных БЦЖ животных методом РНГА. Авторы считают, что отсутствие у животных диагностических титров антител даёт возможность применять РНГА для дифференциации поствакцинальной и инфекционной аллергии.

Н.М. Мандро (1986) для групповой диагностики поствакцинальных реакций предлагает использовать симультанную пробу с использованием ППД-туберкулина для млекопитающих, изготовленного из вакцинного штамма БЦЖ моноаллергена.

В связи с указанным, нами была поставлена задача изучить возможность дифференциации поствакцинальных и инфекционных аллергических реакций у иммунизированных вакциной БЦЖ телят.

Исследования провели на 2386 головах молодняка крупного рогатого скота, иммунизированных вакциной БЦЖ.

Исследования различными методами проводили через 2–6 месяцев после вакцинации БЦЖ по группам животных различными методами (1406 голов). Вводили внутрикожно в области средней трети шеи ППД-туберкулин для млекопитающих в дозах 10000 ТЕ и 1000 ТЕ в 0,2 мл. Кроме этого, в другой группе использовали ППД-туберкулин для млекопитающих в дозе 10000 ТЕ в 0,2 мл и ППД-туберкулин для птиц в дозе 2500 ТЕ в 0,2 мл. Также вводили ППД-туберкулин для млекопитающих в дозе 10000 ТЕ в 0,2 мл, КАМ в дозе 1350 ЕД в 0,2 мл. Еще одной группе вводили ППД-туберкулин для млекопитающих в дозе 10000 ТЕ в 0,2 мл и убитую кипячением в течение 20 мин вакцину БЦЖ в дозе 0,1 мг сухого препарата в 0,2 мл растворителя (БЦЖ-тест). После чего организовали внутрикожное и пальпебральное введение ППД-туберкулина для млекопитающих в дозах 10000 ТЕ/0,2 мл. В качестве итога проводили исследование сывороток крови вакцинированных БЦЖ телят в РСК с КТА УНИИЭВ и с антигеном СибНИВИ.

У всех исследованных животных оценку аллергических реакций проводили по характеру проявления и интенсивности аллергических реакций на туберкулин. Учёт аллергических реакций проводили через 72 часа после внутрикожного введения туберкулинов. Реагирующими считали животных с утолщением кожной складки на 3 мм и выше.

Для выяснения диагностической ценности использованных методов дифференциальной диагностики поствакцинальных реакций провели убой реагирующих и не реагирующих на различные введения туберкулина животных.

Исследования провели в четырёх неблагополучных по туберкулёзу хозяйствах.

Результаты исследований иммунизированных БЦЖ телок представлены в таблице.

Результаты исследования телят через 2–6 месяцев

после иммунизации вакциной БЦЖ

 

Групп-пы живот-ных		Исследо-вано живот-ных	Метод введения аллергена в дозе (ТЕ)		Реагировали и интенсивность реакций в мм
					кол-во	%		М±n
Хозяйство – 1
1	115		ППД-млекоп., 10000 ППД-млекоп., 1000	51 28			44,3 24,3		4,3±0,2 4,2±0,2
2	97		ППД-млекоп.,10000 ППД-птиц, 2500	57 20			58,7 20,6		4,3±0,2 3,7±0,2
3	170		ППД-млекоп.,10000 КАМ, 1350	129 70			75,8 41,2		4,4±0,1 4,3±0,6
Хозяйство – 2
1	289		ППД-млекоп.,10000 ППД-птиц, 2500	120 39			41,5 13,5		4,5±0,6 4,0±0,5
2	166		ППД-млекоп.,10000 ППД-птиц, 2500	83 36			50,0 21,6		4,1±0,2 3,8±0,3
3	112		ППД-млекоп.,10000 ППД-птиц, 2500	35 3			31,2 2,7		4,1±0,2 3,3±0,4
4	76		ППД-млекоп.,10000 КАМ, 1350	57 17			75,0 22,3		4,7±0,2 4,0±0,1
Хозяйство – 3
1	45		ППД-млекоп.,10000 КАМ, 1350	40 17			88,9 37,7		5,9±0,4 4,5±0,3
2	216		ППД-млекоп.,10000 БЦЖ-тест, 0,1 мг	32 22			14,8 10,2		7,8±0,6 5,4±0,4
Хозяйство – 4
1	120		ППД-млекоп.,10000 пальп. ППД-млекоп. 10000	51 41			42,5 34,2		4,5±0,3 2-4 креста
Всего 1406

 

Данные таблицы показывают, что иммунизированные вакциной БЦЖ телята реагировали на внутрикожное введение ППД-туберкулина для млекопитающих, ППД-туберкулина для птиц и КАМ примерно так же, как реагируют заражённые туберкулёзом животные. Тем не менее, по характеру и по интенсивности (размеру) проявления аллергические реакции у иммунизированных телят отличались от проявления реакций у больных туберкулёзом. Так, из данных таблицы 34 видно, что интенсивность аллергических реакций у иммунизированных телят составляет по группам животных 3,3 – 5,9 мм, и только в одной группе животных 7,8 ±0,6 мм, то есть, реакции у иммунизированных телят в основном выявляли в виде плотноватых, тестоватых ограниченных утолщений кожной складки в пределах 3–5 мм.

Кроме того, установлено, что выявление среди иммунизированных телят жёстких, плотных, разлитых (и особенно с некрозом в центре – в месте введения туберкулина) и с большим увеличением толщины кожной складки реакций – указывает на инфекционную природу аллергических реакций.

Так, в хозяйстве 1 через два месяца после иммунизации БЦЖ, наряду с поствакцинальными реакциями, у нескольких телят были выявлены характерные для туберкулёза аллергические реакции. При убое тёлки № 4853, реагировавшей на туберкулин наиболее типично и с увеличением кожной складки 15 мм, обнаружили характерные для туберкулёза изменения в лёгких.

Тем не менее, следует помнить и учитывать, что у некоторых больных туберкулёзом животных выявляют незначительные, слабовыраженные (3–5 мм), нехарактерные реакции. Поэтому при выявлении животных с такими реакциями невозможно дифференцировать поствакцинальные и инфекционные реакции по характеру их проявления и интенсивности аллергических реакций.

Результаты исследований в хозяйстве 2 также показывают, что иммунизированные животные реагируют на внутрикожное введение ППД-туберкулинов для млекопитающих и для птиц, КАМ примерно также, как и инфицированные туберкулёзом животные.

Кроме того, установлено, что вакцинированные телята через 6–7 месяцев после иммунизации реагируют на туберкулин в гораздо меньшем количестве, чем при исследованиях через 2–4 месяца после иммунизации БЦЖ.

В хозяйстве 3 мы также не получили обнадёживающих результатов при дифференциации инфекционных и поствакцинальных реакций с применением БЦЖ-теста и симультанной пробы с ППД-туберкулином для млекопитающих и КАМ. В этом хозяйстве провели убой одного бычка № 120, реагировавшего наиболее характерно и с увеличением кожной складки на ППД для млекопитающих на 14 мм и на БЦЖ-тест – 9 мм. При послеубойном осмотре обнаружили свойственные для туберкулёза изменения в заглоточном лимфоузле.

В хозяйстве 4 установлено, что иммунизированные БЦЖ телята реагируют на внутрикожную и пальпебральную туберкулиновую пробу. В этом хозяйстве пробы крови от 20 реагирующих на внутрикожное и пальпебральное введение туберкулина телят исследовали в РСК с КТА УНИИЭВ и с туберкулёзным антигеном СибНИВИ. Положительные показания в РСК с КТА УНИИЭВ получили с сывороткой крови двух (10,0 %) животных, с антигеном СибНИВИ – сывороткой крови трёх (15,0 %) животных.

Таким образом, результаты наших исследований показывают, что иммунизированные БЦЖ телята реагируют на: внутрикожное введение ППД–туберкулина для млекопитающих в дозе 10000 ТЕ от 14,8 до 88,9 % исследованных животных; ППД–туберкулин для млекопитающих в дозе 1000 ТЕ – 24,3 % животных; ППД–туберкулин для птиц в дозе 2500 ТЕ – от 2,7 до 21,6 % животных; КАМ в дозе 1350 ЕД – от 22,3 до 41,2 % животных; БЦЖ–тест – 10,2 % животных; пальпебральную пробу в дозе 10000 ТЕ – 34,2 % исследованных животных.

Полученные результаты исследований свидетельствуют, что иммунизированные БЦЖ телята реагируют на ППД-туберкулин для млекопитающих в различных разведениях, на ППД-туберкулин для птиц, КАМ, БЦЖ-тест и пальпебральную пробу примерно так же, как и заражённые туберкулёзом животные в неблагополучных хозяйствах.

По характеру и интенсивности проявления поствакцинальные реакции были плотноватые, тестоватые или ограниченные, с утолщением кожной складки, как правило, 3–5 мм, в единичных случаях до 7 мм и больше.

Кроме того, мы организовали изучение возможности дифференциации аллергических реакций на туберкулин у вакцинированных телят через год и более после иммунизации их вакциной БЦЖ. Исследования провели внутрикожным введением ППД-туберкулина для млекопитающих и оценкой аллергических реакций по характеру проявления и интенсивности реакций. В хозяйстве 1 из исследованных 107 голов молодняка крупного рогатого скота реагировали на туберкулин две (1,8 %) особи. При убое тёлки № 0692, реагировавшей с утолщением кожной складки 11 мм, обнаружили характерные для туберкулёза изменения в заглоточном лимфоузле; у тёлки № 3996, реагировавшей с утолщением кожной складки на 8 мм, – в средостенном лимфатическом узле.

В хозяйстве 2 из исследованных 198 голов молодняка крупного рогатого скота реагировали на туберкулин 15 (7,5 %) животных. При убое одной тёлки (№ 358), реагировавшей наиболее характерно на туберкулин (с некрозом в месте введения и увеличением кожной складки – 13 мм), обнаружили характерные для туберкулёза изменения в средостенном лимфатическом узле.

В хозяйстве 3 исследовали три группы животных.

Первая группа – из 237 животных реагировали на туберкулин трое (1,3 %). При убое тёлки № 9345, реагировавшей с утолщением кожной складки 9 мм, обнаружили характерные для туберкулёза изменения в заглоточном лимфатическом узле.

Вторая группа – из 182 животных реагировали на туберкулин шесть (3,3 %). При убое тёлки № 4994, реагировавшей с утолщением кожной складки 6 мм, характерные для туберкулёза изменения обнаружили в лёгких. При убое тёлки № 4886, реагировавшей на туберкулин с утолщением кожной складки 5 мм, характерные для туберкулёза изменения обнаружили в брыжеечных лимфатических узлах.

Третья группа – из 256 животных реагировали на туберкулин 79 (30,8 %). При убое 11 реагировавших на туберкулин телят в семи случаях обнаружили характерные для туберкулёза изменения. При проведении бактериологических исследований заболевание подтвердили ещё у одного животного, то есть, при убое 11 реагирующих телок туберкулёз подтвердили в восьми (72,7 %) случаях.

При выяснении причины появления такого большого количества больных туберкулёзом реагирующих животных среди иммунизированного поголовья установили, что эту группу телят содержали в помещении, где ранее содержали больных туберкулёзом коров.

Всего в трёх хозяйствах через год после иммунизации телят БЦЖ аллергической пробой исследовали 980 голов молодняка крупного рогатого скота. При этом реагировало на туберкулин 105 (10,7 %) животных.

Полученные результаты исследований убедительно указывают, что при иммунизации вакциной БЦЖ телят создаётся слабый иммунитет, который в конечном итоге не предохраняет иммунизированных телят от заражения туберкулёзом.

На основании проведённых исследований и полученных результатов можно сделать заключение, что использование вакцины БЦЖ в комплексе профилактических и оздоровительных мероприятий при туберкулёзе крупного рогатого скота не обладает достаточной эффективностью.

При исследовании иммунизированных БЦЖ животных не установлено дифференцирующего значения ни одного отдельно взятого испытуемого метода. Тем не менее, при изучении интенсивности и характера проявления аллергических реакций установлено, что поствакцинальные реакции обычно плотноватые, тестоватые, ограниченные, а увеличение толщины кожной складки в основном составляет 3–5 мм, в редких случаях реакция достигает 7 и более мм. Поэтому по интенсивности и характеру проявления аллергических реакций можно дифференцировать поствакцинальные реакции у отдельных животных.

• исследования
• наука
• туберкулез
• КРС
• крупный рогатый скот